BCA蛋白定量法是目前广泛使用的蛋白定量方法之一。本产品是基于BCA(Bicin-choninic Acid)法研制而成,实现了对蛋白质进行快速、稳定、灵敏的浓度测定。其原理是在碱性环境下蛋白质分子中的肽链结构能与Cu2+络合生成络合物,同时将Cu2+还原成Cu+,BCA试剂可敏感特异地与Cu+结合,形成稳定的有颜色的复合物,其在562nm处有高的光吸收值,颜色的深浅与蛋白质浓度成正比,可根据吸收值的大小来测定蛋白质的含量。本试剂盒含有牛血清白蛋白(BSA)溶液作为蛋白质标准品溶液,测定范围为20~2,000μg/mL。
试剂A
试剂B
BSA标准品(5mg/mL)
100mL
3mL
1mL
100mL×5
3mL×5
1mL×5
准确性高
变异系数远小于考马斯亮蓝染色法线性范围宽
灵敏,检测范围:20~2,000 μg/mL兼容性好
与金属离子、还原剂、螯合剂及去污剂兼容性较好步骤1: 稀释BSA标准品:
取120μL蛋白标准品(需完全融解),用与待测蛋白样品相一致的稀释液稀释至300μL,使终浓度为2mg/mL。 注意:为方便起见,也可以用0.9%生理盐水或PBS缓冲液稀释标准品。步骤2: 配置显色工作液:
a. 计算显色工作液总量: 工作液总量 = (BSA标准品样本个数+待测样本个数)×复孔数×每个样本显色工作液体积 举例:BSA标准品样本个数为9个,待测样本个数3个,复孔数3个。 显色工作液总量 = (9个BSA标准品样本+3个待测样本)×3个复孔×200μL(每个样本工作液体积) = 7.2 mL b. 根据计算出的所需显色工作液用量,将试剂A和试剂B按照50:1的体积比,配制显色工作液,充分混匀: 注意: ⑴ 由于加样可能存在误差,建议配制BCA工作液时,多配制1~2个孔的量; ⑵ 新配制的BCA工作液室温密封条件下可稳定保存24h。步骤3: 定量检测:
① 将稀释后的标准品按 0,1,2,4,6,8,10,15,20μL分别加到96孔板中,加入用于稀释标准品的溶液补足到20μL(为避免枪尖损失,可先补足稀释液后加入标准品)
1. 本产品可以采用酶标仪(微孔检测法)或者分光光度计(试管检测法)测定蛋白浓度,如使用普通的分光光度计测定,需根据比色皿的最小检测体积,适当加大BCA工作液的用量使其不小于最小检测体积,样品和标准品的用量可相应按比例放大。使用分光光度计测定蛋白浓度时,每个试剂盒可以测定的样品数量可能会显著减少;
2. 试剂在低温条件或长期保存出现沉淀时,可搅拌或37℃温育使其溶解;
3. 建议每次测定蛋白样品时,都须绘制标准曲线,以获得准确数据;
4. BSA标准品的稀释液需与待测样品的稀释液一致(可用1×PBS或0.9%生理盐水进行稀释);
5. 如待测样品中含较多的干扰物质(具体见附表),可采用其它蛋白定量产品;
6. 为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作;
7. 本产品仅限科研使用。

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