本产品将低分子量蛋白电泳 ( 多肽电泳 ) 所需的全套试剂汇于同一试剂盒之中,适用于 2~20 kDa蛋白的变性电泳。试剂盒可配制至少 10 块 PAGE 胶 (8×10 cm,厚度为 0.75 mm 或 1 mm)。
本试剂盒提供的 改良型促凝剂 具有更好的稳定性和催化效能,为方便操作,已开盖的 改良型促凝剂可置于 4℃保存至少三个月。
操作便捷
制胶无需计算所需溶液量,无需稀释彩色上层胶
为上样提供便利适用范围广
凝胶不含SDS,也可用于非变性电泳高分辨率
可以有效分离2~5 kDa多肽(PG311)避免异味
无需使用TEMED,避免恶臭气味方便电泳
试剂盒配有Tris/Tricine/SDS电泳缓冲液,且无需区分阳极缓冲液和阴极缓冲液制胶(以配制一块0.75/1.0mm厚度的8×10cm凝胶为例)
1. 取等体积下层胶溶液和下层胶缓冲液,各2.0/2.7mL,混匀;
2. 向步骤1的混合溶液中加入40/60μL的改良型促凝剂,混匀;
3. 将步骤2的混合溶液注入制胶玻璃板中,使液面和短玻璃板上沿之间的距离比梳齿长0.5cm即可(注意:此溶液为过量,请勿全部注入,可留少许于配胶杯中,以判断胶凝固状况),加入适量水或醇(如异丙醇、正丁醇等)覆盖于下层胶之上;
4. 待下层胶凝固后(约15min),倒去上层水或醇;
注:当水(醇)和胶之间有一条折射线时,说明胶已凝固。
5. 取等体积上层胶溶液和彩色上层胶缓冲液,各0.5/0.75mL,混匀;
注:由于染料的特殊理化性质,使用前请摇匀。
6. 向步骤5的混合溶液中加入10/15μL的改良型促凝剂,混匀;
7. 将步骤6的混合溶液注入制胶玻璃板中,插入梳齿;
8. 待上层胶凝固后(约15min),拔去梳齿即可用于电泳。
电泳
1. 将适量Tris/Tricine/SDS电泳缓冲液(10×)稀释成1×Tris/Tricine/SDS电泳缓冲液;
2. 将样品与Tricine蛋白上样缓冲液(变性,还原型,2×) 等体积混匀,95℃加热5~10min,加热结束后,高速离心5min,上清即可用于电泳分析;
注:蛋白Marker需根据相应说明书进行操作。
3. 向电泳槽的内槽注满1×Tris/Tricine/SDS电泳缓冲液,外槽注入适量1×Tris/Tricine/SDS电泳缓冲液,轻轻拔出梳齿,用移液器将梳孔吹洗干净,将处理后的蛋白样品或Marker加入点样孔,按以下推荐条件进行恒压电泳即可。
10% Tricine胶,120V,1h;
16% Tricine胶,120V,2h。
注意:电泳结束后,应尽快进行后续步骤,防止多肽扩散出凝胶外。
染胶
1. 因多肽在凝胶中易发生扩散,建议将电泳后的Tricine胶在异丙醇固定液(50%异丙醇,10%乙酸,40%纯水)中固定30min后,再进行染色;
2. 弃去异丙醇固定液,加入适量考马斯亮蓝快速染液(免脱色),以覆盖凝胶为宜,室温下于水平摇床上染色10~15min。如蛋白量较低,可适当延长染色时间,实际染色时间可根据条带显现程度决定。染色结束后,弃去染色液,加入纯水洗涤去除残留染液,即可观察结果。
凝胶浓度选择参考
1.本产品制备出的凝胶其上层胶对样品没有浓缩效应,与预制胶类似,但与传统PAGE胶相比,对蛋白条带分离效果更好;
2.不同浓度试剂盒配胶组分请勿混用,否则会影响制胶及电泳效果;
3.改良型促凝剂的使用量仅作参考,实际用量可根据个人实验习惯和经验调整。加入较多量的促凝剂可加速凝胶,反之亦然;
4.凝胶速度与温度有显著的正相关性。同等条件下,温度越高,凝胶速度越快,室温过高时建议适当减小改良型促凝剂的用量;相反,如果室温较低,可适当延长凝胶时间;
5.在配胶之前,使胶溶液及缓冲液平衡到室温(如室温放置几分钟),可有效避免凝胶中气泡的形成;
6.考马斯亮蓝快速染液(免脱色)含挥发性物质,请注意密封以避免失效;
7. 为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作;
8. 本产品仅限科研使用。